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第一篇　基础实验实验一　普通光学显微镜的结构和使用方法 1

实验二　动物细胞的基本形态与显微测量 13

实验三　细胞器的显示与观察 16

实验四　临时制片方法及细胞形态的观察 21

实验五　细胞骨架标本的制备及观察 29

实验六　植物有丝分裂的孚尔根（Feulgen）核染色观察 31

实验七　小鼠减数分裂标本的制备及观察 34

实验八　植物减数分裂与玉米花粉母细胞涂片及观察 37

实验九　蝗虫精巢减数分裂的观察 42

实验十　植物染色体标本的制备与观察 46

实验十一 果蝇唾腺解剖及其染色体观察 49

实验十二 植物染色体显带技术与带型分析 55

实验十三 人类性染色体小体的检测与观察 59

实验十四 人体外周血淋巴细胞的培养及染色体观察 63

实验十五 小鼠骨髓细胞染色体标本的制备与观察 70

实验十六 过氧化氢酶活性的测定与定位 73

实验十七 线粒体和液泡系的活细胞染色 76

实验十八 粗糙链孢霉的杂交 78

实验十九 细胞膜通透性和细胞吞噬活动的观察 86

实验二十 碱裂解法制备少量质粒DNA 89

实验二十一 植物基因组总DNA的提取 93

实验二十二 动物组织细胞DNA的提取与检测 97

实验二十三 数量性状遗传分析 102

实验二十四 苯硫脲（PTC）尝味试验及其基因频率的计算 107

实验二十五　植物有性杂交 110

实验二十六 细胞的有丝分裂 114

实验二十七 细胞中多糖和过氧化物酶的定位 117

实验二十八 细胞内酸性磷酸酶的显示 119

实验二十九 果蝇基因的连锁与交换分析 122

第二篇　综合实验实验三十 细菌遗传转化 125

实验三十一 果蝇形态特征、生活史观察与杂交实验 129

实验三十二 植物多倍体的诱发和鉴定 134

实验三十三 杂种优势的测定与分析 138

实验三十四 植物原生质体的分离和培养 142

实验三十五 细胞计数及活力测定 145

实验三十六 动物细胞原代培养与传代培养 148

实验三十七 植物组织培养技术 151

实验三十八 细胞的冻存和复苏 154

第三篇　开放实验实验三十九 动物细胞融合 156

实验四十 植物体细胞杂交——原生质体融合 158

实验四十一 细胞显微注射技术 162

实验四十二 免疫荧光抗体法检查细胞表面抗原 166

实验四十三 正常细胞与肿瘤细胞常规核型的标本制备 168

实验四十四 间充质干细胞的培养及鉴定 173

实验四十五　染色体的荧光原位杂交 177

实验四十六 分子标记技术及其遗传多态性分析 182

实验四十七 DNA限制酶酶切图谱构建与分析 186

实验四十八　模拟选择对基因频率的影响 190

附录一、常用试剂的配制 192

二、常用染色液的配制 195

三、常用缓冲液的配制 197

四、常用培养基的配制 198

五、X2值表 200

主要参考文献 201

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